Illumina
화학에서 장비까지
클러스터 · 가역 종결 · 촬영 · 데이터
Cambridge의 아이디어에서 San Diego의 산업으로
같은 질문을 다른 방식으로 푸는 NGS 회사들
60분 수업의 경로
| 시간 | 내용 | 학생이 설명할 것 |
|---|---|---|
| 0–8분 | Cambridge·Solexa·특허 | 분자를 멈추고 다시 출발시키는 이유 |
| 8–25분 | 비드·표면·클러스터·SBS | 한 점이 한 서열이 되는 과정 |
| 25–38분 | 현재 장비와 실제 작동 영상 | 시약 이동·온도·촬영·basecalling 구분 |
| 38–52분 | RCA와 경쟁 기술 | 증폭과 읽는 화학의 차이 |
| 52–60분 | San Diego 생태계·정리 | 연구기관·장비회사·제약회사의 역할 |
공식 원리 영상 2분 30초, patterned flow cell 약 1분, 실제 run 준비 약 1분, Element 원리 약 1분, 캠퍼스 두 편 합계 약 1분을 골라 본다. 긴 영상의 나머지는 선택 자료다.
Cambridge, UK — 두 교수와 화학
- Shankar Balasubramanian: 핵산 화학 · David Klenerman: 단일분자 물리화학
- 1997년경 단일분자 측정 논의 → 1998년 Solexa 설립
- 매 주기 같은 분자 위치를 관찰해 “이번에 들어간 염기”를 알아내는 발상
- Colin Barnes·Mark Osborne 등 연구진, 표면 증폭 기술과 공학의 결합으로 상용화
- 2006 Genome Analyzer, 2007년 Illumina가 Solexa 인수
University of Cambridge · Solexa sequencing · Illumina · Sequencing history
Sanger의 멈춤을 되돌리는 화학
- 생어 ddNTP: 3′-H라 다음 연결에 필요한 3′-OH가 없다. 그 가닥은 끝난다.
- 가역 종결 dNTP: 3′-O의 제거 가능한 보호기로 이번 주기만 멈춘다.
- 표지 염기를 넣고 촬영한 뒤 형광·보호기를 제거해 3′-OH를 복원한다.
- 형광의 부착 위치와 제거 반응은 세대·시약에 따라 달라진다. 일반 원리를 특정 최신 시약의 구조로 단정하지 않는다.
특허는 화학·표면·장비의 여러 층
| 문헌 예 | 기술의 층 | 읽을 부분 |
|---|---|---|
| US7057026B2 · Labelled nucleotides | 표지 뉴클레오타이드·제거 가능한 보호 | 구조와 claims에서 결합 위치·제거 조건 |
| US6787308B2 · Arrayed biomolecules | 분자의 공간 배치와 판독 | 배열에서 각각의 신호를 구분하는 방법 |
| WO1998044151A1 · Method of nucleic acid amplification | 표면에서 핵산 증폭 | 고정 프라이머와 표면 colony 형성 |
Solexa의 두 교수만으로 전체 기술을 설명하지 않는다. 표면 증폭 특허에는 Kawashima·Farinelli·Mayer 등 별도 연구진의 기여가 있다.
US7057026B2 · Labelled nucleotides · US6787308B2 · Arrayed biomolecules · WO1998044151A1 · Surface amplification
원특허 도면 — 배열에서 무엇을 읽는가?
- Balasubramanian·Klenerman의 실제 공개 특허 도면을 본다.
- 분자·지지체·공간적 위치가 어떻게 연결되는지 본문과 함께 읽는다.
- 특허 도면은 구현 개념의 증거다. 현재 NovaSeq X 내부 사진과 구분한다.
- 법적 보호 범위는 도면 하나가 아니라 청구항·국가·시점에 따라 정해진다.
“SBS 원천특허 만료”를 어떻게 읽을까?
개별 공개 문헌의 기술·상태 읽기 · 2026-10-31 조회
- 예: US7057026B2는 Google Patents 공개 상태에 Expired – Lifetime, 예상 만료 2023-07-25로 표시되어 있다.
- 이 한 건의 미국 공개 상태를 모든 나라·모든 SBS 특허의 일괄 만료로 확대할 수 없다.
- 후속 뉴클레오타이드·효소·표면 증폭·광학·칩 특허는 별도다.
- 새 회사는 다른 화학·검출·증폭, 라이선스, 시장 변화 등 여러 경로로 등장한다.
- 강의 비교 기준은 특허 상태 하나보다 무엇을 복제하고 무엇을 측정하는가이다.
세 축으로 보면 기술이 덜 헷갈린다
| 축 | 선택지 | 서로 다른 질문 |
|---|---|---|
| 신호를 만드는 단위 | 클론 증폭 / 단일분자 | DNA 사본을 먼저 많이 만드는가? |
| 반응 위치 | 비드·웰 / 평면·nanowell / ZMW / pore | 반응을 어디에 분리하는가? |
| 판독 | 합성 / 결합 / 라이게이션 / 전류 | 염기를 어떤 신호로 알아내는가? |
비드도 배열할 수 있고, 평면 위 단일분자도 배열할 수 있다. PacBio는 ZMW 배열, ONT는 다수 pore 센서를 쓴다. “증폭 없음”과 “배열 없음”은 다른 말이다.
비드에서 시작하는 두 실험
- 454·Ion Torrent: 주형 DNA를 비드 위에서 증폭해 서열을 판독한다.
- Illumina BeadArray: 특정 위치를 알아보는 프로브가 코팅된 비드로 알려진 변이를 검사한다.
- Infinium 어레이는 genotyping·methylation의 도구이며 Illumina SBS flow cell과 다르다.
- 두 경우 모두 비드를 쓰지만 비드 위 물질과 묻는 질문이 다르다.
Illumina · BeadArray technology · Margulies et al., Nature (2005), doi:10.1038/nature03959
BeadArray 영상 — 무엇이 고정되어 있나?
Illumina 공식 · 선택 시청: SBS와 구분하기

BeadArray 영상 — 무엇이 고정되어 있나?
프로브 비드가 웰에 놓이고 샘플 DNA가 결합하는 부분을 선택해서 본다. 시퀀싱 클러스터와 다른 점 두 가지를 말한다.
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Illumina · Illumina Infinium Assay: An Overview
표면 클러스터 — 한 점에 같은 서열
한 DNA 분자의 약한 신호를 같은 서열의 여러 사본으로 키운다. 한 점에 서로 다른 주형이 섞이면 색이 혼합되어 품질이 떨어진다.
무작위 bridge와 patterned flow cell
- 고전적 비패턴 flow cell: 표면에서 bridge 증폭, 클러스터 위치가 무작위
- 패턴 flow cell: 정해진 nanowell에 클러스터를 배치해 밀도와 공간 구분을 높임
- Exclusion amplification은 patterned 플랫폼에서 한 위치의 클론 점유를 돕는 방식
- 현재 플랫폼 전체를 옛 bridge 영상만으로 설명하지 않는다.
회사 영상 — patterned flow cell
Illumina 공식 · 약 1분 발췌

회사 영상 — patterned flow cell
규칙적인 웰과 점유 과정을 본다. “패턴”이 DNA 염기서열이 아니라 반응 위치를 뜻한다는 점을 확인한다.
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Illumina · Illumina | Patterned Flow Cell Technology
SBS 한 주기 — 반응·촬영·재시작
- 각 클러스터는 서로 다른 염기를 넣을 수 있지만 한 클러스터 내부 사본들은 같은 위치를 읽는다.
- 시약 흐름은 기질·세척·절단 용액을 바꾸고, 온도 제어는 효소 반응을 돕는다.
- 도입 자체는 분자 규모 반응이다. 장비 영상에서 보이는 시약 이동과 화학 애니메이션을 연결한다.
NAS에 있던 SBS 설명 영상 — 공식 원본
NAS 원본 5:13 실제 디코딩 확인 · Illumina 공식 채널과 대조

NAS에 있던 SBS 설명 영상 — 공식 원본
수업에서는 1:00–3:30을 본다. 어댑터→클러스터→도입→촬영→표지 제거의 위치를 가리킨다. 최신 patterned/XLEAP 변화는 다음 장과 비교한다.
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Illumina · Overview of Illumina Sequencing by Synthesis Workflow | Standard SBS chemistry
4색에서 2채널로 — 이미지를 염기로
- 초기 4색 방식: 염기별 형광 채널로 도입을 구분
- 2채널 방식: 두 이미지의 신호 조합으로 네 염기를 구분
- NovaSeq X XLEAP-SBS는 blue·green 채널을 쓴다. 구형 red·green 표를 그대로 적용하지 않는다.
- MiSeq i100은 세 형광 염료·두 이미지 인코딩을 쓴다. 같은 XLEAP 이름이어도 세부 구현은 확인해야 한다.
Illumina · NovaSeq X chemistry and imaging · Illumina · MiSeq i100 encoding
Phasing — 일부 사본이 발을 맞추지 못한다
- 도입 누락·불완전한 탈보호 등으로 일부 사본이 뒤처지거나 앞서 나갈 수 있다.
- 한 점의 신호가 여러 주기의 염기를 섞어 담으면 읽기가 어려워진다.
- 화학의 효율, 촬영의 신호 대 잡음, 분석 보정이 함께 중요하다.
- 높은 read 수만으로 품질을 설명하지 않는다. %Q30·유효 reads·균일도도 본다.
현재 장비 — 규모에 따라 고른다
2026-10-31 공식 제품 페이지 기준 · 가격 비교 제외
| 제품군 | 주로 보는 규모 | 공통·차이 |
|---|---|---|
| MiSeq i100 / i100 Plus | 작은 배치·표적·미생물 등 | XLEAP-SBS, 간단한 run 준비·빠른 회전 |
| NextSeq 1000 / 2000 | 중간 규모 WGS·RNA·단일세포 프로젝트 | 다양한 flow cell; 모델별 지원 용량 확인 |
| NovaSeq X / X Plus | 대형 코호트·높은 처리량 | 패턴 flow cell·XLEAP-SBS; Plus는 두 flow cell 운용 |
Genome Analyzer·HiSeq·구형 MiSeq 사진은 역사 자료다. “가장 최신”과 “지금 연구실에서 쓰는 장비”도 다르다. 수치 비교는 flow cell·cycles·소프트웨어 조건을 함께 읽는다.
MiSeq i100 — 작은 배치의 실제 장비
실제 실험 — MiSeq i100 run 준비
Illumina 공식 Starting a sequencing run · 약 1분 발췌

실제 실험 — MiSeq i100 run 준비
시약·flow cell을 어디에 넣는지, run 정보를 언제 지정하는지 본다. 눈에 보이는 준비와 칩 안의 분자 반응을 구분한다.
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Illumina · Illumina MiSeq™ i100 Series | Introduction to starting a run
NextSeq 1000/2000 — flow cell과 출력
NovaSeq X — 시료가 칩으로 들어가는 장면
실제 장비 — NovaSeq X run 시작
Illumina 공식 · 약 1분 발췌

실제 장비 — NovaSeq X run 시작
로딩→시약 공급→자동 run의 경계를 본다. 칩의 한 점이 이후 FASTQ 한 read의 근거가 되는 과정을 앞의 SBS 그림으로 설명한다.
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Illumina · Illumina NovaSeq X Series | The limits of high-throughput sequencing redefined
고도화는 무엇을 개선했나?
| 부분 | 개선 방향 | 데이터에서 볼 결과 |
|---|---|---|
| 표면·nanowell | 위치·점유·밀도 제어 | 유효 클러스터·사용 가능한 reads |
| 효소·기질·탈보호 | 빠르고 완전한 주기 반응 | 주기별 Q·phasing·불완전 반응 |
| 광학·채널 | 광 안정성·촬영 효율 | 신호 분리·영상 획득 시간 |
| 분석·계산 | basecall·demultiplex·DRAGEN 등 | FASTQ 산출·정렬·변이 분석 시간 |
회사 간 %Q30은 같은 시료·cycle·필터·염기 보정 조건이 아니면 직접 순위로 쓰기 어렵다. 광고 수치와 동일 조건 검증을 구분한다.
Illumina · SBS technology · Illumina · NovaSeq X chemistry and imaging
다른 회사와 비교할 세 질문
- 1. 주형을 어디서 어떻게 늘리는가? ePCR·bridge·RCA·증폭 없음
- 2. 한 주기에서 염기를 무엇으로 알아내는가? 도입·결합·라이게이션·전류
- 3. 읽기가 어려운 오류는 무엇인가? 치환·호모폴리머 indel·문맥·혼합 신호
- RCA는 원형 주형을 반복 복제하는 증폭 방법이다. RCA라는 이름만으로 판독 화학을 알 수는 없다.
MGI DNBSEQ — 칩 밖 RCA와 나노볼
원형 주형을 RCA로 길게 복제하고 DNA nanoball로 만들어 patterned array에 올린다. 현대 cPAS의 anchor·probe/합성 신호를 초기 Complete Genomics cPAL 라이게이션과 구분한다.
DNBSEQ 회사 영상 — 공이 되는 DNA
MGI 공식 · 1:23 전체 또는 핵심 1분

DNBSEQ 회사 영상 — 공이 되는 DNA
원형화·RCA·DNB·배열·판독의 순서에서 증폭이 끝나는 지점을 찾는다. Illumina 표면 클러스터와 비교한다.
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MGI · MGI's Proprietary DNBSEQ™ Technology
Element AVITI — RCA와 avidity를 분리
- RCA로 flow cell 위 polony를 만든다. “PCR 없음”은 “증폭 없음”이 아니다.
- 다중 결합 avidite가 같은 polony의 복수 사본에 결합해 신호를 안정화한다.
- 형광으로 알아보는 단계와 가닥을 한 염기 늘리는 단계를 분리해 최적화한다.
- MGI와 RCA라는 공통점은 있지만 polony 형성과 염기 인식 구현이 다르다.
Element 공식 설명 — 인식과 신장은 언제 분리되나?
Element 공식 · Unique Chemistry · 선택 발췌

Element 공식 설명 — 인식과 신장은 언제 분리되나?
약 10분 전체는 선택 자료. 수업에서는 avidite 결합과 incorporation을 비교하는 부분 1분을 골라 보고 두 단계를 표시한다.
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Element Biosciences · 2 of 4 | Sequencing on the AVITI™ - Unique Chemistry
Rapid SBS · SBB · mnSBS의 차이
| 기술·회사 | 주요 원리 | 구분 포인트 |
|---|---|---|
| Singular G4X · Rapid SBS | 4색 합성 기반 형광 판독 | G4X를 SBB로 분류하지 않기 |
| 역사적 Onso · SBB | 염기 결합을 측정하고 신장 단계 분리 | SMRT/HiFi와 별도; 현재 PacBio 공급 종료 안내 |
| Ultima · mnSBS | 주로 자연 기질과 소량 표지 기질, flow 기반 | 비드·열린 회전 wafer·광학 스캔; 일시 종결 1염기 cycle과 다름 |
flow 방식에서는 같은 염기가 연속 도입될 수 있어 신호량과 반복 길이의 관계가 중요하다. 구체 오류율은 같은 데이터로 검증한다.
Singular · Rapid SBS on G4X · PacBio · SBB (Onso 공급 종료 안내 포함) · Simmons et al. · mnSBS 원저 (2023) · Ultima · 현재 플랫폼
비교표 — 기술 페이지를 읽는 기준
| 회사·기술 | 증폭/배치 | 염기 판독 | 수업의 핵심 차이 |
|---|---|---|---|
| Illumina | 표면 클러스터·patterned nanowell | 가역 종결 SBS | 도입·촬영·탈보호 |
| MGI DNBSEQ | RCA DNB·patterned array | cPAS | 칩 밖 DNB 형성과 판독 분리 |
| Element AVITI | 표면 RCA polony | Avidity 인식 + 별도 신장 | 인식 화학과 효소 도입 분리 |
| Singular | 클론·flow cell | 4색 Rapid SBS | SBB와 혼동하지 않기 |
| Ultima | 클론 비드·open wafer | mnSBS flow·광학 | 동일 염기 연속 도입과 스캔 |
| PacBio / ONT | 단일분자·ZMW / pore | 실시간 형광 / 전류 | 증폭 없이 관측; 다음 강의 |
Illumina · SBS technology · MGI · DNBSEQ technology · Element · Avidite base chemistry · Singular · Rapid SBS on G4X · Simmons et al. · mnSBS 원저 (2023) · Ultima · 현재 플랫폼
San Diego — 연구와 산업이 모이는 곳
Illumina 본사 · UC San Diego · Salk · 제약·바이오텍 연구 거점
Illumina 본사 — 회사와 캠퍼스를 함께 보기
- 본사: 5200 Illumina Way, San Diego
- UCSD·La Jolla 연구권과 가까운 장비·시약·분석 기업
- 캠브리지의 화학 연구가 캘리포니아의 장비·소모품·데이터 산업으로 이어짐
- 지도상의 거리와 실제 공동 연구 관계를 구분한다.
UCSD와 Salk — 가까운 별개의 기관
- UC San Diego: La Jolla의 공립 연구대학·의료·생명과학 교육
- Salk Institute: Jonas Salk가 1960년 세운 독립 연구기관
- Louis Kahn 설계 건물은 1965년 개관; 건축과 실험실의 공존
- Salk는 UCSD의 학과나 부속기관이 아니다.
UC San Diego — 공식 캠퍼스 투어
UC San Diego Undergraduate Admissions 공식 · 선택 시청

UC San Diego — 공식 캠퍼스 투어
캠퍼스 전경을 30초 정도 보고 대학·병원·연구 시설이 하나의 지역에 모여 있는 모습을 확인한다.
YouTube 원본으로 보기공식 채널의 원리 영상. 제목·채널·존재를 oEmbed로 확인(2026-10-31). 자동 재생 없음. 임베드가 제한되면 원본 링크 이용.
UC San Diego Undergraduate Admissions · Explore UC San Diego with a Virtual Tour
Salk — 연구실을 담은 건축
Salk Institute 공식 Virtual Architecture Tour · Introduction

Salk — 연구실을 담은 건축
중정·연구동이 보이는 소개 부분을 30초 정도 본다. 건축 영상이며 시퀀싱 원리 영상과 목적을 구분한다.
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Salk Institute · Salk architecture - introduction
Pfizer와 바이오텍 — 이 지역에서 하는 일
| 조직 | 주요 역할 | 시퀀싱과의 연결 |
|---|---|---|
| UCSD · Salk · Scripps Research | 교육·기초 연구·새로운 표적 탐색 | 원리·질병 기전·바이오마커 |
| Illumina 등 장비·시약 기업 | 판독 플랫폼·화학·분석 도구 | 대규모 데이터 생성 |
| Pfizer 등 제약 연구 거점 | 약물 개발·검증·중개 연구 | 표적 검증·암 유전체·환자 연구 |
Pfizer 공식 소개는 2026년 San Diego 운영의 새 캠퍼스 이전과 oncology 연구 거점을 설명한다. 옛 La Jolla 주소를 현재 거점 지도 핀으로 재사용하지 않았다.
정리 — 칩의 한 점에서 다음 강의로
- 가역 종결 화학은 시간축에서 한 염기씩 구분한다.
- 클러스터·비드·RCA는 신호를 키우는 방법이고, 촬영·결합·전류는 읽는 방법이다.
- 장비는 이 반응을 흐름·온도·광학·계산으로 반복한다.
- FASTQ와 분석 기초 → PacBio → ONT → NGS decoding
- 실험 원리 상세 페이지 · 사진·영상·특허 출처