MOLECULAR INFORMATION ENGINEERING 11-4

Nanopore Structures and Oxford Nanopore

고체 단백질 하이브리드 포어와 ONT

나노포어의 물리적 구조 / 책 기반 ONT 감지와 motor / ONT 장비와 라이브러리 / Basecalling과 데이터 저장

송영준 Youngjun Song / 인천대학교 / 75분

Nanopore의 측정 원리

cistrans막 / nanopore기준: Vcis = 0 mVVtrans = +180 mVDNA (−)의 전기영동 힘양의 관습적 전류: trans → cisVm = Vtrans − Vcis ; 실제 protocol의 부호 관례 확인
편집 가능한 강의용 회로·구조 모형
  • 전해질 두 방 사이의 작은 통로
  • 바이어스 전압에 따른 이온 이동
  • 분자 통과에 따른 전류 변화
  • 사건 검출과 염기서열 분석의 구분

https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24658537/

Solid-state pore 고체 포어

solid_fig1
Kwok et al., PLOS ONE (2014), Fig. 1
  • SiN, SiO2 등 고체막의 나노 구멍
  • 직경·막 두께·표면 전하의 설계
  • 전자빔·이온빔·절연 파괴 등 제작 방법
  • 분자 통과 신호와 구조·크기 분석

https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0092880

Controlled dielectric breakdown

  • 절연막에 전기장을 가해 국소 결함 형성
  • 이온 전류 증가로 포어 형성 감지
  • 제어된 조건에서 개구 크기 조정
  • 제작 전압과 판독 전압의 구분
  1. 절연막과 전해질 준비
  2. 국소 전기장에 의한 결함 성장
  3. 전류 변화로 통로 형성 감지
  4. 제작 종료 후 판독 조건으로 전환

https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0092880

고체 포어에서의 DNA 사건

solid_fig4
Kwok et al., PLOS ONE (2014), Fig. 4
  • 직선 통과와 접힌 통과
  • Blockade 크기와 체류 시간의 분포
  • 표면 상호작용·전기삼투의 영향
  • 빠른 통과와 염기 구분의 어려움

https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0092880

Protein pore 단백질 포어

  • 막 단백질의 자기조립 통로
  • 반복 가능한 원자 수준 구조
  • 아미노산 변이로 통로 특성 조정
  • 막 안정성과 단백질 상태의 영향

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.4

대표 단백질 포어

protein_comparison
분자정보공학 강의 도식, Branton and Deamer 2019 Fig.4.1 기반
  • α-Hemolysin: 초기 단일분자 실험
  • MspA: 짧은 constriction의 감지
  • CsgG 계열: ONT 기술과의 연결
  • 단량체 수와 상용 kit 사양의 구분

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.4; https://nanoporetech.com/platform/technology/basecalling

Hybrid pore 하이브리드 포어

고체 포어와 분자 포어의 결합고체 지지막분자 포어통로 내부 전류경계 틈의 누설과 단백질의 결합 안정성을 함께 평가
편집 가능한 강의용 회로·구조 모형
  • 고체 지지 구조와 분자 인식 구조의 결합
  • 예: 고체 포어에 α-HL 단백질 삽입
  • 예: DNA origami를 결합한 통로
  • 지지체 안정성·분자 구조·누설의 공동 문제

https://doi.org/10.1038/nnano.2010.237

하이브리드 구조의 신호 경로

  • 원하는 전류 경로: 분자 포어 내부
  • 원치 않는 경로: 고체·분자 경계의 누설
  • 결합 위치와 기계적 안정성
  • 포어 삽입 전후 conductance 비교

https://doi.org/10.1038/nnano.2010.237

세 종류의 포어 비교

구조조절 방법주요 과제
Solid-state재료·가공·표면잡음·속도·균일성
Protein아미노산·자기조립막·단백질 안정성
Hybrid고체와 분자 구조 결합누설·배치·결합 안정성
  • 고체: 형상·표면·두께의 가공
  • 단백질: 자기조립·변이·분자 감지
  • 하이브리드: 두 구조의 결합과 경계 제어
  • 상용 염기 판독 성능과 연구 센서의 구분
확인·실습 문제

하이브리드 포어의 틈이 누설 경로가 될 때 생기는 문제

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction (2019)

cis와 trans 챔버

cistrans막 / nanopore기준: Vcis = 0 mVVtrans = +180 mVDNA (−)의 전기영동 힘양의 관습적 전류: trans → cisVm = Vtrans − Vcis ; 실제 protocol의 부호 관례 확인
편집 가능한 강의용 회로·구조 모형
  • Cis: 이 강의에서 DNA를 넣는 쪽
  • Trans: 막 반대쪽
  • 막과 포어가 두 전해질 공간을 연결
  • 전극 위치와 전압 부호의 명시

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.1

Open-pore current와 blockade

정의 Definition
  • KCl 용액 두 방(cis · trans) 사이 막에 포어 1개 · 전압 V → 이온이 포어로만 흐름 = 이온 전류
  • 옴의 법칙 R = V / I · 저항은 가장 좁은 곳의 단면적(반지름²)에 반비례
  • 막힘: 음전하 ssDNA가 전압에 끌려 들어와 통로를 막음 → 전류 감소
  • 부딪히기만 한 분자는 짧고(<110 µs) 덜 막음(<70%) → 진짜 통과와 구별
  • Deamer 가설: 막힘 안의 계단 = 감지 구역 속 염기 조합
예제 Example
1200 pA 포어 삽입막힘 1개 확대 ↓ TGTCTCGAAT
  • 120 mV · 120 pA → R = 0.120 ÷ 1.2×10⁻¹⁰ = 1 GΩ
  • 단위 전하량 환산 = 1.2×10⁻¹⁰ C/s ÷ 1.6×10⁻¹⁹ C ≈ 7.5×10⁸개/s (책: 약 7억)
  • DNA로 ~10 pA → R = 12 GΩ · 면적: (0.6/0.75)² ≈ 65%를 DNA가 차지

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction (2019), Ch.1. 전류 예제는 역사적 조건의 설명.

Blockade amplitude와 dwell time

  • Open-pore baseline I0
  • 분자 사건 중 전류 I
  • Blockade: ΔI=I0−I
  • Dwell time: 사건의 지속 시간

ΔI = I₀ − I ; normalized blockade = ΔI / I₀

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.1

감지 구역과 k-mer

Different types of nanopore
Oxford Nanopore Technologies
  • 좁은 구역의 여러 염기가 함께 전류에 영향
  • k개 염기의 조합: 4^k개 가능한 서열
  • 전류 준위가 모두 균등·분리되는 것은 아님
  • 앞뒤 문맥과 시간 정보를 함께 이용

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.4

모터 없는 통과의 시간 문제

  • 전기장에 의한 빠른 핵산 이동
  • 염기별 신호에 필요한 관찰 시간
  • 빠른 이동, 잡음, 필터의 절충
  • 포획과 제어된 이동의 분리

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.1 and Ch.5

Motor protein의 작동

motor_steps
분자정보공학 강의 도식, Branton and Deamer 2019 Fig.5.3 기반
  • DNA에 결합한 효소가 포어 입구에서 이동 조절
  • 전기장이 끄는 힘과 motor의 단계적 진행
  • dsDNA를 풀어 단일가닥을 통과
  • Motor와 감지 포어의 역할 분리
  1. 어댑터·motor가 결합한 DNA 포획
  2. Motor가 포어 입구에 위치
  3. 가닥 분리와 단계적 이동
  4. 감지 구역의 연속 전류 기록

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.5

Polymerase motor와 helicase motor

  • 초기 연구의 polymerase 기반 ratcheting
  • Helicase의 가닥 분리·이동 조절
  • 결합 유지 능력 processivity
  • 단백질 종류와 상용 변이의 구분

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.5

ONT 원리 공식 영상

How Oxford Nanopore sequencing works

Oxford Nanopore Technologies (1:04)YouTube에서 보기

영상의 관찰 항목

  • 포어·막·motor의 상대 위치
  • 전류를 운반하는 이온
  • DNA 이동과 신호 변화
  • 전류에서 염기로 변환하는 분석

https://nanoporetech.com/platform/technology

Flow cell의 구성

Photo of portable MinION sequencing device
Oxford Nanopore Technologies
  • 전해질 공간과 다수 sensing site
  • 막·포어·전극의 국소 구조
  • 센서 회로와 다중 채널 기록
  • Flow cell과 MinION 본체의 역할

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.6; https://nanoporetech.com/platform/technology

MinION에서 PromethION까지

Photo of PromethION 24 sequencing device
Oxford Nanopore Technologies
  • 휴대형과 다중 flow cell 시스템
  • 같은 전류 기반 판독 원리
  • 채널 수·가동률·분자 길이의 출력 영향
  • 명목 채널 수와 생산적인 read 수의 차이

https://nanoporetech.com/platform/technology

Sequencing adapter의 역할

  • DNA 말단에 판독에 필요한 구조 부착
  • Motor의 결합과 제어된 포획
  • 막 근처 농도와 포획의 설계
  • Adapter와 데이터 payload의 구분

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.8

Ligation kit와 rapid kit

  • Ligation: 말단 준비 후 adapter 연결
  • Rapid: transposase를 이용한 준비 방식
  • 입력 길이·시료 상태·목적에 따른 선택
  • 책의 과거 시간·수율은 현행 kit와 분리

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.8

Barcode와 multiplexing

  • 여러 시료를 한 run에서 함께 판독
  • Barcode를 이용한 demultiplexing
  • 판독된 barcode의 오류와 미분류 read
  • 파일 주소·가닥 index와 구별

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.8

Direct RNA와 변형 염기

  • Native 분자 자체의 신호 관측
  • RNA adapter와 motor의 차이
  • 역전사·PCR에서 사라질 수 있는 정보
  • 수정 염기 call과 ACGT call의 구분

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.8; https://nanoporetech.com/platform/technology

전류 신호와 basecalling

Basecall
Oxford Nanopore Technologies
  • 시간축에 따른 연속적인 전류 기록
  • 문맥·이동 상태·잡음을 포함한 신호
  • 학습 모형으로 염기와 품질 점수 추정
  • Raw signal과 FASTQ의 구분

https://nanoporetech.com/platform/technology/basecalling

HMM에서 neural basecaller까지

Neural networks
Oxford Nanopore Technologies
  • Step·stay·skip을 생각하는 초기 모형
  • 이웃 신호를 함께 이용하는 신경망
  • Dorado 등 소프트웨어와 model의 버전
  • Chemistry와 basecaller의 공동 변화

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction, World Scientific, 2019 Ch.9; https://nanoporetech.com/platform/technology/basecalling

Duplex와 adaptive sampling

  • Duplex: 상보 두 가닥의 정보를 결합
  • Adaptive sampling: 읽는 도중 표적을 선택
  • 추가 관측과 추가 화학 처리의 구분
  • 짧은 올리고의 주소·처리 시간 제약

https://nanoporetech.com/platform/technology

2019년 책과 현재 ONT — 이어서 읽기

검토·보강 · 2026-10-31

책에서 확인한 원리현행으로 넘어갈 때
Ch.1 · cis/trans·전류접지와 전압의 부호 관례를 명시
Ch.4–5 · pore·motor감지 영역과 이동 제어를 별도 설명
Ch.6 · sensor array2019 MinION 수치와 현행 flow cell 사양 구분
Ch.8 · ligation·rapid·barcode책의 kit 시간·입력량을 최신 kit 지침으로 확인
Ch.9 · basecalling과거 HMM·poretools·ont2d 명령을 현행 Dorado 명령으로 복사하지 않기
현재 데이터 경로

POD5 원시 전류 → chemistry에 맞는 Dorado model → BAM/FASTQ → 정렬·변이 또는 DNA 디코딩. R9/R10, motor, 속도, model 버전은 한 묶음으로 기록한다.

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing: An Introduction (2019), Ch.1·4·5·6·8·9 · ONT · Dorado documentation

나노포어 확인 문제

  • 고체·단백질·하이브리드 구조 비교
  • Motor와 sensing pore의 역할
  • k-mer 수와 실제 전류 분해능의 차이
  • Raw signal에서 FASTQ까지의 순서
확인·실습 문제

cis/trans와 전압 관례를 표시하고 DNA·이온·전기 신호의 경로 설명

Branton & Deamer (eds.), Nanopore Sequencing An Introduction (2019)